生化学 SEIKAGAKU
Journal of Japanese Biochemical Society

近年，幹細胞を利用した再生医療樹立の試みが数多く実施されている．再生医療への応用が期待される幹細胞として，胚性幹細胞（embryonic stem cell：ES細胞）や人工多能性幹細胞（induced pluripotent stem cell：iPS細胞）などが知られているが，ES細胞の医療応用は倫理的な理由から制限され，また，iPS細胞の医療応用はその発がん性の理由から制限されている．一方，間葉系幹細胞（mesenchymal stem cell：MSC）などの体性幹細胞は，倫理的な問題点や発がん性などのリスクを避けて用いることのできる利便性を有しており，再生医療の現場での有用性の高い幹細胞である．

特に，MSCは骨髄や脂肪組織などに存在し，骨芽細胞，軟骨細胞ならびに脂肪細胞に分化する幹細胞である^1）．MSCは，プラスチック培養プレートに接着して増殖しコロニーを形成するとともに，CD73（ecto-5′-nucleotidase），CD90（Thy1）ならびにCD105（endoglin, SH2）などの細胞表面抗原を発現するが，CD34, CD45あるいはHLA-DRなどの造血性細胞表面抗原を発現しない^2）．最近では，CD146やCD271（low-affinity nerve growth factor receptor）もMSCに特異的に発現するものとして解釈されている^1）．MSCの分離は，骨髄組織あるいは脂肪組織由来細胞集団から，セルソーターを利用して，MSC特異的表面抗原を認識する抗体への結合を指標に行う．その後，プラスチック培養プレート表面に付着するMSCを培養し増殖させるが，その増殖に伴い，MSCの老化による増殖能の低下，あるいは多分化能の低下が生じてしまう^3）．このため，組織再生に十分な数のMSCをex vivoでの培養で獲得するにはMSCの増殖に伴う増殖能の低下や細胞死を防ぐとともに，この細胞の多分化能を維持する手法の開発が必要である．我々は，ヒトMSC細胞株が骨芽細胞分化する前後の遺伝子発現頻度差を網羅的に解析し，MSCのstemness（幹細胞性：細胞生存率や細胞移動能ならびに多分化能）の維持に働く新たな分子機構を発見した．

ヒトMSC細胞株UE7T-13を骨芽細胞誘導培地で刺激した前後でのmRNAを抽出しDNAマイクロアレイを用いて遺伝子発現を解析したところ，Scrapie responsive gene 1（SCRG1）遺伝子の発現が骨芽細胞分化後では分化前と比較して20分の1に減少していた^4）．SCRG1遺伝子はスクレイピーに感染して伝達性海綿状脳症（transmissible spongiform encephalopathy：TSE）を呈したマウスの脳でその発現が増加する遺伝子として報告された^5）．SCRG1はN末端に分泌シグナルを有する98個のアミノ酸からなるペプチドであるが，TSEでみられる神経細胞変性に伴いその発現が認められるとの報告があり，TSE発症との関連性が注目されている^6）．MSCにおけるSCRG1の機能は不明であったため，SCRG1がUE7T-13細胞のstemnessにどのように関わるかを検討した．

まず，ヒトSCRG1リコンビナントタンパク質（recombinant human SCRG1：rhSCRG1）を作製しUE7T-13細胞に投与したところ，MSCの細胞移動に深く関わるとされるextracellular signal-regulated kinase（ERK），c-jun N-terminal kinase（JNK），ならびにphosphoinositide 3-kinase（PI3K）/AKTの活性化が認められた．興味深いことに，rhSCRG1によるこれらのシグナル伝達分子の活性化は骨芽細胞分化誘導後のUE7T-13細胞では認められないため，SCRG1受容体の発現がこの細胞の骨芽細胞分化とともに減少するものと仮定し，次にSCRG1受容体の同定を試みた．先に述べたDNAマイクロアレイの結果を確かめたところ，膜結合タンパク質をコードする遺伝子であるbone marrow stromal cell antigen 1（BST1）とhyaluronan sysnthase 2（HAS2）の発現が，骨芽細胞分化に伴い減少していた．これらの膜結合タンパク質のうちBST1の遺伝子をノックダウンしたところUE7T-13細胞におけるrhSCRG1によるAKTやERKシグナルの活性化が抑制されたが，HAS2遺伝子のノックダウンでは抑制されなかった．加えて，BST1タンパク質が免疫沈降法によりrhSCRG1と共沈することが確認されたことから，BST1がSCRG1のMSCにおける受容体であることが強く示唆された．また，SCRG1/BST1からの刺激はUE7T-13細胞の移動能をfocal adhesion kinase（FAK）ならびにPI3K依存的に促進した．なお，BST1はインテグリンβ1あるいはβ2と複合体を形成しFAKを活性化することが知られている^7）ことから，我々はSCRG1とBST1によるシグナル伝達様式が図1のように行われるものと予測している．さらには，骨髄由来MSC（bone marrow-derived MSC：BM-MSC）の初代培養細胞では，通常この細胞の移動能は継代数の増加（細胞増殖）に伴い減少するが，rhSCRG1刺激下で増殖させた場合には移動能は維持された．以上の結果より，SCRG1はMSC表面のBST1に結合し，細胞移動能をFAKならびにPI3K依存的に増強することが初めて示された^4）．

図1 SCRG1とBST1による新たなリガンド／受容体系がMSCのstemnessに与える影響について

SCRG1はMSCから分泌された後，BST1ならびにインテグリンβ1と複合体を形成し，FAK/PI3K依存的にこの細胞の移動能の増強や骨芽細胞分化能の維持に働く．加えて，SCRG1はこの細胞の生存率を向上させるが，このために必要なシグナル伝達経路はまだ明らかにされていない．

一方，UE7T-13細胞を骨芽細胞分化誘導培地で刺激した際，rhSCRG1は，この細胞の骨芽細胞分化をFAKならびにPI3K依存的に抑制した．また，rhSCRG1刺激下で増殖した初代培養BM-MSCでは，通常では継代数の増加（細胞増殖）に伴い低下する骨芽細胞分化能が維持された^4）．これらの結果から，rhSCRG1はMSCの未分化性を保ち，その骨芽細胞分化能を維持する働きがあると考えられた．さらに，rhSCRG1で刺激した初代培養BM-MSCでは，通常では継代数の増加（細胞増殖）に伴い低下する細胞生存率が維持されたままの状態となった^4）．特に最近，CD271^＋/CD90^＋/CD106^high＋のMSCは高い自己複製能と多分化能を有すると報告されている^5）．BM-MSCでのCD271の発現は通常では継代数の増加に伴い減少するが，rhSCRG1を与えた細胞ではその発現が維持された．さらに，幹細胞の多分化能を維持する転写因子POU5F1の発現は，通常ではBM-MSCの継代数の増加に伴い減少するが，rhSCRG1を与えた細胞ではその発現が維持された^4）．

SCRG1/BST1系による刺激はex vivoで増殖中のMSCの移動能，生存能，ならびに骨芽細胞分化能を保ち，この細胞のstemnessの維持に働くことが明らかになった．なお，SCRG1/BST1刺激による細胞生存率の上昇効果がどのようなシグナル伝達経路を介して働くのか，また，SCRG1を免疫沈降した際にBST1とともに共沈するインテグリンβ1がSCRG1/BST1系によるstemnessの維持機構にどのように関わるかについても解析が必要と考える．

我々は以前に，UE7T-13細胞が細胞密度依存的にCD106の発現を上昇させることを報告した^8）．そこで，MSCどうしの接着結合（adherence junction：AJ）の主要な構成分子であるN-カドヘリン^9）に注目し，この分子がUE7T-13細胞における細胞密度依存的なCD106の発現にどのように働くかを検討した．一方，Liuらは，血管内皮細胞どうしの接着におけるVE-カドヘリン間の結合により，その近隣に存在する受容体型チロシンキナーゼ（receptor tyrosine kinase：RTK）の一つである血管内皮細胞増殖因子（vascular endothelial cell growth factor：VEGF）受容体がSrc依存的に，かつリガンド（VEGF）非依存的に活性化され，その結果，Shcをリン酸化して活性化することを見いだした^10）．また，この活性化Shcは，アテローム形成に関わる炎症性シグナルをnuclear factor-kappa B（NF-κB）依存的に伝えることが明らかにされた．興味深いことに，我々が見いだしたUE7T-13細胞における細胞密度依存的なCD106の発現促進効果もSrcならびにNF-κB依存的であることから^8），UE7T-13細胞どうしの接着におけるN-カドヘリン間の結合により，近隣のRTKがSrc依存的に活性化された後，ShcとNF-κB依存的にCD106の発現が促進されるものと予測している（図2）．実際に，platelet growth factor（PDGF）受容体（PDGF receptor：PDGFR）の阻害剤やPDGFRβの発現ノックダウンによりこの細胞密度依存的なCD106の発現促進効果が解除されたため，この効果はPDGFRβを介するものと判断された^11）．また，PDGFRβによるこのCD106の発現促進効果はリガンド（PDGF-BB）非依存的であった．一方，N-カドヘリンをUE7T-13細胞に強発現させると，この細胞におけるSrcの活性化が増強されるとともにCD106の発現が増加した^11）．今後，MSCどうしがN-カドヘリンにより接着した際に活性化されるSrc, PDGFRβならびにNF-κBが，Shcとともにいかなるシグナルカスケードを形成するか明確にしたい．

図2 MSCどうしの細胞接着がstemnessに与える影響について

MSCの細胞膜上に存在するN-カドヘリンによりMSCどうしが接着すると，Src, PDGFβ受容体，NF-κB依存的にCD106の発現が増強される．一方，血管内皮細胞では，VE-カドヘリンによる細胞接着の際にSrc依存的にRTKの一つであるVEGF受容体を活性化するが，その後，活性化VEGF受容体によりShcがリン酸化されて活性化して，NF-κB経路を活性化してアテローム形成を促進することが知られている（本文参照）．この際，活性化VEGF受容体によるShcの活性化はリガンド非依存的に起こることが知られており，実際に我々の実験系でもN-カドヘリンによるPDGFβ受容体の活性化がリガンド非依存的に起こることを明らかにしている．我々は，N-カドヘリンによるCD106の発現増強作用において働く分子機構は，VE-カドヘリンによるアテローム形成増強作用で働く分子機構と同様であると予測している．

MSCのex vivoでの大量培養におけるstemnessの維持にはSCRG1/BST1系ならびにN-カドヘリンを介した細胞接着系によるCD271やCD106の発現誘導が関わることが示唆された．MSC培養系にSCRG1を投与するとともに細胞密度を高く保つことで，自己複製能と多分化能を併せ持つMSCが大量に調製できると期待される（図3）．

図3 MSCのex vivoにおける新たな大量培養法について

MSCを有効に再生医療に利用するためには，骨髄などの臓器から抽出したMSCをex vivoで大量培養する必要がある．この際，細胞密度を高く保ち（1.0×10⁵/cm²），MSCどうしのN-カドヘリンによる細胞接着を促すことにより，CD106の発現を増強させる．また，SCRG1を作用させることにより，MSCの生存率の向上を促すとともに，大量増殖させる（継代を重ねる）期間中の骨芽細胞分化能を維持する．加えて，SCRG1は移植後の旺盛な組織再生能を発現させるための細胞移動能を増強する．このような培養条件下で大量に調製されたMSCを体内で骨再生が必要な部位に移植する．

最近我々は，蛍光タンパク質を全身の細胞で発現するトランスジェニックマウスから分離したMSCを株化することに成功した^{12, 13）}．テトラサイクリンなどの薬剤感受性発現ベクターにSCRG1を組み入れてこれを蛍光発現によりトレース可能なMSCに遺伝子導入した後にヌードマウスに移植して，SCRG1がin vivoでもMSCのstemnessの維持に働き，組織再生能を増強しうるか検討したい．また我々は，歯根膜線維芽細胞が細胞間接触によりMSCの骨芽細胞分化能を増強することを報告したが^14），この効果にN-カドヘリンが関わるかどうか明らかにしたい．

最近，MSCは組織再生に働くだけでなく，慢性炎症を治癒させる免疫抑制効果があることが明らかにされた^15）．我々が見いだしたSCRG1/BST1やN-カドヘリン／PDGFRβを介した細胞内シグナルがMSCの免疫抑制効果の発現にどのように影響するかについても調べていきたい．