生化学 SEIKAGAKU
Journal of Japanese Biochemical Society

Ca^2＋は生体内のさまざまな場面で重要な役割を果たすシグナリングイオンである．その働きは筋収縮や受精に始まり細胞死に至るまで多岐にわたり，“生と死をつかさどるイオン”ということができる．このため，Ca^2＋の細胞内濃度は厳密に制御されている．真核細胞において最も重要なCa^2＋レギュレーターの一つはミトコンドリアであるが，そのCa^2＋濃度調節に関わるメカニズムは最近までほとんどわかっていなかった．ミトコンドリアによる細胞内Ca^2＋濃度の調節機構の中核となるのはミトコンドリアへのCa^2＋取り込みを行うカルシウムユニポーターによる単輸送機構である．50年以上にわたり不明であったカルシウムユニポーターを構成する分子群がここ5年ほどの間に続々と同定された．これにより，カルシウムユニポーターはポア形成サブユニットとそれに結合する複数の調節サブユニットによって構成されることがわかってきた．関連分子の同定により，この複合体がどのようにCa^2＋を取り込んでいるのか，さらにはなぜその取り込み機構が細胞や多くの器官の機能に重要なのか，といったより深い疑問に対してアプローチが可能になった．本稿では，筆者らが最近明らかにした知見を踏まえながら，カルシウムユニポーターがCa^2＋を取り込む分子機構を中心に最新の動向を紹介する．

ミトコンドリアとCa^2＋に関する研究は，1960年代に複数の研究グループが動物組織から高純度に精製したミトコンドリアがCa^2＋を取り込み内部に保持する性質を持つことを報告したことに始まる^1）．このCa^2＋の取り込みは一部の真菌を除く広い生物種のミトコンドリアで観察され，進化の過程を通じたその重要性が認識されてきた．その後，この取り込みはミトコンドリア内膜を介した膜電位を駆動力として起こり，他の陰イオンや陽イオンとの交換を必要としないことが示され，この輸送を担保する分子は“カルシウムユニポーター”と呼ばれるようになった^2）（図1A）．カルシウムユニポーターはミトコンドリア外のCa^2＋濃度が低いときにはCa^2＋取り込み活性を示さず，ミトコンドリア外Ca^2＋濃度が高いと（＞10 µM）と取り込み活性を示す，というユニークな性質を持ち，このシグモイド型のCa^2＋応答性から複数のタンパク質によって構成されると考えられていた．2004年，ミトプラストに対する電気生理学的解析によって，高いCa^2＋選択性とコンダクタンスが確認されたことから^3），このカルシウムユニポーターはチャネル性の輸送様式を持つことが明らかにされたものの，その分子実体は依然不明のままであった．

図1 ミトコンドリアのCa^2＋取り込み機構

（A）ミトコンドリアのカルシウムユニポーターとその生理的役割．（B）カルシウムユニポーターの構成分子．

カルシウムユニポーターの生理的役割に関しては古くから多くの報告がなされている．1980年代には，カルシウムユニポーターを介してミトコンドリアのマトリックス内に取り込まれたCa^2＋がマトリックス内に存在する3種類のデヒドロゲナーゼを活性化して代謝調節に関わることが報告された^4）．その後，カルシウムユニポーターは細胞質のカルシウムウェーブ（Ca^2＋濃度上昇の伝播）に影響を与えることも明らかにされた^5）．さらに，カルシウムユニポーターを介してミトコンドリア内に過剰なCa^2＋が取り込まれた場合には，ミトコンドリア内膜の物質透過性が上昇する現象（透過性遷移）が誘起され，これが細胞死の引き金を引くこともわかった^6）．透過性遷移は虚血再灌流障害やウルリッヒ型筋ジストロフィー症をはじめとする疾患の原因とされ，カルシウムユニポーターはこれらの疾患の治療標的としても注目されている．

カルシウムユニポーターの生理的な役割に関する研究が進展する一方で，カルシウムユニポーター自体がCa^2＋を取り込む分子機構の理解は長らく停滞していた．状況が進展する契機となったのは，ミトコンドリアを構成するタンパク質のデータベースMitoCarta（2008年）の公開であった．MitoCartaを元に，2010年V. Mootha博士らは，ミトコンドリアのCa^2＋取り込み能を持たない酵母とCa^2＋取り込み能を持つトリパノソーマの間でミトコンドリアを構成するタンパク質群を比較することにより，mitochondrial calcium uptake 1（MICU1）を同定した^7）．このMICU1の同定を皮切りに，mitochondrial calcium uniporter（MCU）^{8, 9）}，またそれらのパラログである，MICU2^10）, MICU3^10）, MCUb^11），さらに，2012年にはmitochondrial calcium uniporter regulator 1（MCUR1）^12），2013年にはessential MCU regulatory element（EMRE）といった関連分子が次々と同定された^13）．これらの中で中枢神経系選択的に存在するMICU3以外のすべてのサブユニットは全身に存在している．現在，カルシウムユニポーターは6～7種のサブユニットで構成された複合体チャネルとして機能していると考えられている（図1B）．これまでの解析により，2回膜貫通型タンパク質であるMCUがオリゴマー化してチャネル孔を形成し，他のサブユニットがそのチャネル孔の開閉を調節していると考えられているが，個々のサブユニットの機能に関してはいまだ不明な点が多く残されている．現在見つかっている分子がサブユニットのすべてであるかは不明であるが，これらの分子群には生体内に存在する既知のカルシウムイオンチャネルとの構造的な類似性が認められない．このことから，カルシウムユニポーターは新規のカルシウムイオンチャネルであると考えられ，その構造機能相関に興味が持たれる．

これまでに発見された七つのサブユニットの中で，Ca^2＋取り込みに必須なサブユニットはどれであろうか？　これまでに，MCUがチャネル孔を構成するという漠然とした認識はあったものの，MCUが単独でCa^2＋取り込みを行うのか，という疑問は残されたままだった．そこでまず，我々はこの疑問に解答を得ることを試みた．

これまで，カルシウムユニポーターの分子機構の研究は特定のサブユニットを欠損させた動物細胞を使って進められてきた．しかし，このアプローチを使って，「Ca^2＋取り込みにはMCUだけで十分か？」という疑問に答えるには複数の遺伝子の欠損が必要となる上，欠損させた遺伝子の機能が他のサブユニットによって代替される可能性も否定できない．このような弱点を回避するため，我々は酵母に注目した．ミトコンドリアへのCa^2＋取り込み機能はヒトから真菌まで広く保存されているが，興味深いことに酵母Saccharomyces cerevisiae（以下，酵母）では欠損している．実際，酵母のゲノム上にはカルシウムユニポーターのサブユニット群のオルソログは認められない．この特性を利用し，酵母に哺乳類のカルシウムユニポーターのサブユニットを発現させることにより，特定のサブユニットだけを持つミトコンドリアの調製が可能である．この方法は内在するサブユニットに由来する二次的な影響を受けず，個々のサブユニットの機能を選択的にミトコンドリア上で解析できるという利点を持つ．

このような考えのもと，我々は酵母にマウスのカルシウムユニポーターのサブユニットを単独またはさまざまな二つの組合せで発現させ，ミトコンドリアにCa^2＋取り込み活性が認められるかを調べた．その結果，MCUをはじめとする各サブユニットはいずれも単独ではCa^2＋取り込み活性を示さなかったが，MCUとEMREを共発現させた場合にのみ顕著なCa^2＋取り込み活性を示すことが明らかになった（図2）．このことは，既知の七つのサブユニットの中で，MCUとEMREの二つがCa^2＋取り込みを行う最小単位であることを示している^14）．

図2 ミトコンドリアへのCa^2＋取り込みに必須の因子

マウスのカルシウムユニポーターのサブユニットを単独または二つ同時に発現させた酵母からミトコンドリアを単離し，Ca^2＋取り込み活性を測定した．野生型酵母のミトコンドリアにカルシウムイオノフォア（ETH129）を添加した際に観察されるCa^2＋取り込み活性を1.0として相対活性を示した．丸印は発現させた遺伝子を示す．

MCUとEMREがCa^2＋取り込みに必須であることがわかったので，次にそれぞれの分子の役割について解析を進めることにした．これまでの知見から，MCUはチャネル孔を形成することが示唆されている．しかしながら，EMREはノックアウトした場合にCa^2＋取り込み機能が消失することがわかっていたのみで具体的な役割は不明であった．そこで我々は，EMREに焦点をあて，酵母発現系を使ってその構造と機能を調べた^14）．

1）EMREの構造機能解析

まず，EMREがミトコンドリアでのMCUのタンパク質安定性に寄与する可能性について検討した．その結果，MCUを単独で発現させた場合とEMREと共発現させた場合とで，ミトコンドリアでのMCUの存在量は変化しなかった．したがって，EMREはMCUのタンパク質安定性に寄与する因子ではないと考えられた．

一般に，イオンチャネルに存在するいくつかの酸性アミノ酸が，基質となる陽イオンの集積や結合に寄与する．そこで，種間でよく保存されたEMREの酸性アミノ酸について変異体を構築し，Ca^2＋取り込みに及ぼす影響を調べた．その結果，いずれの変異体を発現させたミトコンドリアも野生型EMREと同等のCa^2＋取り込み活性を示した．このことは，EMREは直接Ca^2＋と結合してCa^2＋取り込みに寄与するのではないことを示唆している．一方で，酸性アミノ酸以外についても，さまざまな変異体を構築して解析を行ったところ，Pro60の変異体（P60A）とSer85-Asn90を欠損した変異体（∆85-90）では，Ca^2＋取り込みがまったく観察されなくなることがわかった（図3A）．

図3 EMREの構造機能解析

（A）マウスEMREについてさまざまな変異体を構築し，MCUとともに酵母に発現させた．これら酵母から単離したミトコンドリアへのCa^2＋取り込み活性を測定した．（B）二つのEMRE変異体（∆85-90とP60A）について，FLAGタグを付加したMCUとの相互作用を，FLAG抗体を使った免疫沈降法により調べた．IP：免疫沈降画分．（C）ミトコンドリアのCa^2＋取り込みの分子機構モデル．MCUオリゴマーにより形成されたチャネル孔はEMREがないと“閉じた”状態である（左図）．EMREはC末端を膜間領域側に配向して内膜に存在し，内膜の両側でMCUと相互作用することにより，MCUが形成するチャネル孔を“開いた”状態に固定する（右図）．

2）EMREとMCUの相互作用の重要性

P60Aや∆85-90ではなぜ機能が消失したのであろうか？　EMREはMCUと相互作用するタンパク質として同定されたので，機能を失ったEMRE変異体とMCUとの相互作用に影響がないか免疫沈降法により調べた．その結果，P60Aと∆85-90はいずれもMCUと相互作用しないことが明らかになった．この結果から，ミトコンドリアへのCa^2＋の取り込みにはEMREとMCUの相互作用が必須であり，その相互作用にはEMREのマトリックス側に位置するPro60と細胞質側に位置するSer85-Asn90が関与することがわかった（図3B）．

以上の筆者らの解析から，EMREは，1）それ単独ではCa^2＋の取り込み活性を持たない，2）MCUの局在やタンパク質安定性に関わる因子ではない，3）Ca^2＋の集積やイオン種の選択機能に関与しない，4）MCUとの相互作用がCa^2＋取り込みに必須である，ことを明らかにすることができた．また，変異体解析の結果から，EMREとMCUは内膜を介した両側で相互作用していることが示唆される．この両者の密接な相互作用様式から，MCUがチャネル孔を形成することを前提とするならば，EMREはMCUが形成するチャネル孔を“開孔状態に固定する構造因子”として機能していると考えられる（図3C）．

昨年早くも，NMRと電子顕微鏡を使って，MCUの膜貫通ドメインの立体構造が解明され，MCUが五量体でチャネル孔を形成していることが明らかにされた^15）．しかし，明らかになった構造はチャネル孔が狭い“閉じた”状態の構造であった．この結果は，このMCUの立体構造がEMRE非存在下で得られたことを考えると納得できる．逆に，我々が本稿で提唱するように，EMRE存在下であればチャネルが“開いた”構造となるのか，また，その構造の中ではEMREが開孔状態を固定するように存在するのか，という点が興味深い．また，EMREには他の調節サブユニットがMCUに結合する際の“足場”としての機能も示唆されており，現在我々も詳しい解析を行っている．EMREはマルチな機能を持つのかもしれない．

ミトコンドリアカルシウムユニポーターの分子機構は構造の一部が解き明かされたばかりであり，Ca^2＋取り込みの構造機能相関もさることながら，冒頭で述べたCa^2＋を取り込む閾値を規定するメカニズム，組織間でCa^2＋取り込み活性を変えているメカニズム，疾患との関わりなど，興味深い課題が山積している．今後も，ミトコンドリアのCa^2＋取り込みの分子機構に関する理解を深めていきたい．