生化学 SEIKAGAKU
Journal of Japanese Biochemical Society

「動く遺伝子」として知られるトランスポゾンは，ゲノム内を移動する遺伝的要素であり，1950年代にバーバラ・マクリントックにより発見された^1）．この発見によりマクリントックは1983年にノーベル生理学・医学賞を受賞した．トランスポゾンは，自身の塩基配列のコピーをゲノム内の別の位置に挿入し，ゲノムの構造と機能に大きな影響を与える．したがって，トランスポゾンは生物の進化や遺伝的多様性において重要な役割を果たすと考えられている．実際，ヒトゲノムの約40％はトランスポゾン由来の配列で占められている．トランスポゾンはDNA型とRNA型（レトロトランスポゾン）の二つに分類され，それぞれの転移メカニズムは長年にわたって研究されてきたが，その複雑性と多様性から未解明な点も多く残されている．トランスポゾンの転移を触媒する酵素は，長鎖DNAの組込みをはじめとするゲノム編集技術への応用においても注目されている．

DNA型トランスポゾンは，「カット&ペースト」メカニズムを用いてゲノム内を移動する．通常のDNA型トランスポゾンは，自身の転移を触媒する酵素（トランスポザーゼ）をコードする配列と両末端の逆向き反復（terminal inverted repeat：TIR）配列からなる．トランスポゾンから転写・翻訳されたトランスポザーゼはTIR配列を認識しトランスポゾン配列を切り出し，ゲノムDNAの異なる領域に挿入する^2）．

挿入配列（insertion sequence：IS）因子は，原核生物のゲノムに存在する小型の転移因子であり，トランスポザーゼ遺伝子とTIR配列から構成される^3）．IS因子は，トランスポザーゼの種類や転移メカニズムの違いに基づき，約30のファミリーに分類される．通常のIS因子と異なり，大腸菌由来IS621因子を含むIS110ファミリー因子は，環状DNA中間体としてゲノムDNAから切り出され，特定の配列（ターゲット配列）を持つゲノム領域に転移する^4）（図1）．したがって，IS110ファミリー因子の転移を触媒する酵素は，標的DNAに対する特異性の低いトランスポザーゼではなく，Creなどの部位特異的リコンビナーゼに近い性質を持つため，リコンビナーゼに分類される．また，他のトランスポザーゼやリコンビナーゼと異なり，IS110リコンビナーゼは特徴的なDEDDモチーフ（Asp–Glu–Asp–Asp）を含むRuvCドメイン，および，保存されたセリン残基を含むTnpドメインを持つ^5）．このような特徴から，IS110ファミリー因子の転移メカニズムは既知のIS因子と異なることが示唆されていたが，その詳細は不明だった．

図1 IS621因子の転移サイクル

IS621因子が環状DNA中間体として切り出されるメカニズムは不明であり，今後の研究が待たれる．

大腸菌由来のIS621因子は，IS110ファミリー因子に分類され，レフトエンド（LE），IS621リコンビナーゼ遺伝子，ライトエンド（RE）からなる（図1）．IS621因子の環状DNA中間体（ドナーDNA）は，レフトドナー（LD）配列，コア配列（シトシンとチミンの2塩基），ライトドナー（RD）配列を持つ（図1）．一方，転移先のゲノム領域（ターゲットDNA）は，レフトターゲット（LT）配列，コア配列，ライトターゲット（RT）配列を持つ（図1）．ドナーDNAとターゲットDNAの間の組換え反応はコア配列付近で起きる．しかし，そのメカニズムは不明だった．

我々は，Arc研究所のPatrick D. Hsu博士との共同研究により，IS621因子はIS621リコンビナーゼに加え，非コードRNA（ブリッジRNAと命名）を産生することを発見した（図1）^6）．RNA-seq解析により，IS621因子の環状DNA中間体のRE–LEジャンクション（LD–コア–RD配列付近）から177塩基のブリッジRNAが転写されることが明らかになった．興味深いことに，環状DNA中間体の形成に伴い，σ⁷⁰プロモーターが再構成され，ブリッジRNAの転写が誘導されることが示唆された．

RNA二次構造予測の結果，ブリッジRNAはドナー結合ループ（DBL）とターゲット結合ループ（TBL）の二つのループ領域を持つことが判明した（図1）．さらに，バイオインフォマティクス解析の結果，TBLのレフトターゲットガイド（LTG）とライトターゲットガイド（RTG）が，ターゲットDNAのボトム鎖に含まれるレフトターゲット（LT）とライトターゲット（RT）とそれぞれ塩基相補性を持つことが明らかになった（図1）．同様に，DBLのレフトドナーガイド（LDG）とライトドナーガイド（RDG）はドナーDNAのレフトドナー（LD）とライトドナー（RD）と塩基相補性を持つことが判明した．生化学的解析および細胞生物学的解析の結果，IS621リコンビナーゼはブリッジRNAと複合体を形成し，ブリッジRNAのTBLとDBLに相補的な配列を持つターゲットDNAおよびドナーDNAの間の組換え反応を触媒することが明らかになった（図1）．重要なことに，TBLとDBLの塩基配列は変更可能であるため，IS621リコンビナーゼとブリッジRNAを利用すると，さまざまな塩基配列を持つターゲットDNAとドナーDNAの間の組換えが可能である．これらの結果から，IS621リコンビナーゼは従来の常識を覆すプログラム可能なRNA依存性DNA組換え酵素であることが明らかになった．

機能解析の結果，IS621リコンビナーゼはブリッジRNAと協働して，ドナーDNAとターゲットDNAを認識し，2分子の二本鎖DNA（合計4本のDNA鎖）の切断，交換，再結合という複雑な反応を触媒することが示唆された．この前例のないDNA組換えメカニズムを解明するため，クライオ電子顕微鏡解析を用いて，IS621リコンビナーゼ–ブリッジRNA–ドナーDNA–ターゲットDNA複合体の立体構造を決定した^7）（図2）．構造解析の結果，四つのIS621リコンビナーゼ分子（IS621.1～IS621.4と命名），TBL, DBL，ターゲットDNA，および，ドナーDNAが複合体を形成することが明らかになった．二つの二量体（IS621.1/IS621.2とIS621.3/IS621.4）が，それぞれTBLおよびDBLに結合し，ターゲットDNAおよびドナーDNAを認識していた．IS621リコンビナーゼはRuvCドメイン，コイルドコイル（CC）ドメイン，Tnpドメインから構成されており，RuvCドメインの保存された四つのアミノ酸残基（D11, E60, D102, D105）とTnpドメインの保存されたセリン残基S241が活性部位を形成することが明らかになった．

図2 IS621リコンビナーゼ–ブリッジRNA–ドナーDNA–ターゲットDNA複合体の立体構造

下段にはIS621リコンビナーゼ四量体のみを示した．DNA切断部位を黄色の三角形で示した．tDNA：ターゲットDNA, dDNA：ドナーDNA, TS：トップ鎖，BS：ボトム鎖．

機能解析の結果と一致して，TBLおよびDBLはそれぞれターゲットDNAおよびドナーDNAと塩基対を形成していた（図3）．このことから，IS621リコンビナーゼがブリッジRNA依存的にドナーDNAおよびターゲットDNAを認識することが説明された．予想外なことに，IS621.1とIS621.2は別の二量体に含まれるIS621.4とIS621.3と活性部位を形成し，それぞれターゲットDNAおよびドナーDNAのトップ鎖を切断していた（RT/RD, LT/LDを含むDNA鎖をそれぞれトップ鎖，ボトム鎖と呼ぶ）（図2）．IS621.1のRuvCドメイン（RuvC.1）とIS621.4のTnpドメイン（Tnp.4）の活性部位では，ターゲットDNAのトップ鎖が切断され，Tnp.4の触媒セリン残基S241がターゲットDNAのA10と5′-ホスホセリン共有結合中間体を形成し，3′-ヒドロキシ基を持つC9が生成されていた（図3）．同様に，RuvC.3とTnp.2の活性部位において，ドナーDNAのトップ鎖が切断され，Tnp.2の触媒セリン残基S241とドナーDNAのT10が共有結合中間体を形成し，3′-ヒドロキシ基を持つC9が生成されていた（図3）．Tnp.1およびTnp.3のS241は活性部位の形成には関与せず，特定の構造をとっていなかった．これらの結果から，この複合体構造はターゲットDNAおよびドナーDNAのトップ鎖が切断され，交換直前の状態を捉えたものであることが示唆された．

図3 ブリッジRNAによるドナーDNAおよびターゲットDNA認識メカニズム

DNA切断部位を黄色の三角形で示した．

トップ鎖の切断後，ターゲットDNAおよびドナーDNAはどのようにして交換されるのだろうか？リコンビナーゼに関する文献調査の結果，IS621リコンビナーゼはチロシンリコンビナーゼであるCreと予想外の類似性を持つことが明らかになった．CreはloxPと呼ばれる特定の塩基配列を持つ2本の二本鎖DNAを認識し，それらの間の組換え反応を触媒する^8）．CreはIS621とアミノ酸配列の類似性を持たないが，同様に四量体としてDNAに結合し，基質DNAのトップ鎖を切断する．Creは触媒チロシン残基を用いて2本のトップ鎖を切断し，3′-ホスホチロシン中間体と5′-ヒドロキシ基を生成する．この5′-ヒドロキシ基がもう一方のトップ鎖の3′-ホスホチロシン中間体に求核攻撃を行い，トップ鎖の再結合が起こる．これにより，トップ鎖が交換され，ホリデイジャンクション中間体が形成される．その後，同様にボトム鎖の切断，交換，再結合が起こり，DNA組換え反応が完了する．したがって，IS621が触媒する組換え反応においても，トップ鎖切断によって生じた3′-ヒドロキシ基が，もう一方のトップ鎖の5′-ホスホセリン中間体に求核攻撃し，トップ鎖の再結合が起きると予想された．

このDNA組換えメカニズムでは，トップ鎖（ターゲットDNAとドナーDNA）とブリッジRNA（TBLとDBL）の間の塩基対形成のパターンが，トップ鎖交換とDNA組換えの効率に影響を与えると考えられた．実際に，機能解析の結果，トップ鎖交換前にターゲットDNAとドナーDNAの6～7位（コア配列の上流）が，それぞれTBLとDBLと相補性を持つ場合（ターゲットDNA-TBL，ドナーDNA-DBLの塩基対が形成される），トップ鎖の交換が起きにくく組換え反応が阻害されることが確認された．一方，トップ鎖の交換後にターゲットDNAとドナーDNAの6～7位がそれぞれDBLとTBLと相補性を持つ場合（ターゲットDNA-DBL，ドナーDNA-TBLの塩基対が形成される），組換え反応が促進された．これらの結果から，ターゲットDNAおよびドナーDNAの6～7位とTBLおよびDBLの間の塩基相補性が，DNA組換え効率を決定することが明らかになった．そこで，TBL・DBLのこのガイド領域を「handshake guide（HSG）」と名づけた（図3）．

IS621リコンビナーゼによるDNA組換えメカニズムを解明するために，トップ鎖交換後にDBLおよびTBLのHSGと塩基対を形成するターゲットDNAおよびドナーDNAを用いて，クライオ電子顕微鏡解析を行った．その結果，二つのトップ鎖交換後の状態（ボトム鎖の切断前後）のIS621–ブリッジRNA–ドナーDNA–ターゲットDNA複合体構造の決定に成功した（図4）．これらの構造から，ターゲットDNAおよびドナーDNAのトップ鎖が交換され，6～7位とコア配列（8～9位）がDBLおよびTBLと塩基対を形成し，ターゲットDNAとドナーDNAの間で再結合が起こることが確認された．ボトム鎖の切断後の構造では，トップ鎖の切断に関与していなかったRuvC.4/Tnp.1およびRuvC.2/Tnp.3が活性部位を形成しボトム鎖を切断していた．

図4 IS621リコンビナーゼ–ブリッジRNA–ドナーDNA–ターゲットDNA複合体の立体構造

見やすさのためIS621リコンビナーゼとブリッジRNAは示さず，DNAのみを示した．RuvC/Tnp活性部位の残基をスティックモデルで示した．DNA切断部位を黄色の三角形で示した．

三つの反応中間体の構造比較により，IS621リコンビナーゼがブリッジRNAと協働してターゲットDNAとドナーDNAの組換え反応を触媒するメカニズムが解明された（図5）．まず，2分子のIS621リコンビナーゼがTBLとDBLに結合し，IS621-TBL二量体とIS621-DBL二量体を形成する．これらの二量体がそれぞれターゲットDNAとドナーDNAを認識してIS621-TBL–ターゲットDNAとIS621-DBL–ドナーDNAが形成される．その後，これらの複合体が組み合わさってIS621-TBL-DBL–ターゲットDNA–ドナーDNA複合体を形成する．この複合体が形成されると，ターゲットDNAおよびドナーDNAのトップ鎖の切断，交換，再結合が行われ，続いてボトム鎖の切断と交換が続く．最終的に，ミスマッチ塩基が修復され，組換え反応が完了すると考えられる．

図5 IS621リコンビナーゼによるDNA組換えメカニズム

DNA切断部位を黄色の三角形で示した．

「プログラム可能な」IS110ブリッジRNAシステムは，これまでCRISPR-Cas9では不可能だった長鎖DNAの組込みなどの大規模なゲノム編集を可能にする．このシステムが哺乳類細胞で機能するかは不明だが，ゲノムの大規模な欠失を伴う遺伝病の治療やゲノムデザインといったさまざまな応用が期待される．大腸菌由来IS621のほかにも，多様なIS110ファミリーリコンビナーゼが多数同定されており，それらの構造機能解析により，IS110システムの理解が進むことが期待される^6）．

IS110リコンビナーゼは，ブリッジRNAと協働してドナーDNAとターゲットDNAを認識し，2本のDNA鎖を切断，交換，結合した後，残りの2本も切断・交換するというきわめて複雑な反応を触媒する．このような酵素が存在することは予想外であり，自然界には予想を超える機能を持つ酵素が存在することを再認識した．共同研究者であるPatrickとは，彼がFeng Zhangラボの大学院生時代からの知り合いであり，2014年のCRISPR-Cas9の結晶構造解析に関する論文^9）の共著者でもある．それから10年が経ち，互いに研究室を主宰するようになり，新たな共同研究を通じてこのような大きな発見をなしとげられたことを非常にうれしく思う．